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技术文章

鸡小肠上皮细胞永生化细胞构建方法及SV40基因检测结果

更新更新时间:2024-11-01 浏览次数:124

1.试验所需仪器设备及试剂

(1)仪器

仪器名称

规格型号

生物安全柜

BSC-1500ⅡA2-X

CO2细胞培养箱

BC-J160S

荧光倒置显微镜

DS-Ri2

高速冷冻离心机

Multifuge X1R

电热恒温鼓风干燥箱

DHG-9123A

电热恒温震荡水槽

DK-2B


(2)试剂耗材

试剂名称

规格/货号

T25细胞培养瓶

430639

血球计数板

Neubauer improved

24孔板专用细胞爬片

YA0350

细胞培养孔板

WHB-24

胎牛血清

1414426

上皮细胞专用培养基

Primed-iCell-001

多聚甲醛(PFA)

P1110

DAPI

C0060

Triton X-100

T8200

山羊血清

SL038

ck19

10712-1-AP

Alexa Fluor 488 - conjugated Affinipure Goat Anti-Rabbit IgG(H+L)

SA00006-2

Fluoromount-G荧光封片剂

0100-01

2.鸡小肠上皮细胞的分离培养

去孵化9day的鸡蛋,蛋壳表面用酒精棉球消毒。

敲开蛋壳,将鸡胚固定于无菌操作板上,取出小肠,置于含抗生素的PBS缓冲液中清洗数次。

将肠管剪成小于1mm3的碎片,转移至50mL的离心管中,加入无血清基础培养基清洗,用移液管反复吹打,1200r/min离心4min。

按上述步骤反复清洗组织块4~5次,直至上清液澄清。

将组织块均匀接种于基质胶包被的T25细胞培养瓶中,加入1mL上皮细胞wan全培养基,将培养瓶倒置于37℃,5%CO2,饱和湿度的培养箱中静置1小时。

翻转培养瓶使其正置,可见培养液浸润组织。

置于培养箱中继续培养,次日显微镜下观察并换液。

后续每天观察,2~3day换液,期间去掉飘起的组织块,直至细胞长满整个瓶底。

细胞培养图片如下:

                   100x                                          200x

原图见文件-细胞培养

3.免疫荧光鉴定

3.1实验步骤

(1)细胞爬片

取3片玻璃片于24孔板中,每孔加入培养基1mL,加入细胞0.02million个/孔。置培养箱2h或过夜。

(2)固定

细胞爬片后,吸出培养基,用PBS洗1遍,加入4% PFA于4℃固定30min。用PBS洗3×5min/次。也可最后一次不吸出PBS,放4℃过夜。

(3)破膜封闭

将玻片除去水分,置于培养皿支撑物上,

玻璃片封闭液配置:0.5% Trition X-100与PBS 1:1混合,再加10% 血清,

取50uL破膜封闭液滴于防水膜上,将玻片上有细胞的一面盖上2h。

(4)一抗孵育

一抗配制:抗体与PBS 1:100(200)稀释

破膜封闭后,取50uL一抗于防水膜上(湿盒中),将玻片(有细胞的一面)盖上置于4℃(最多可放置一周)

(5)二抗孵育

室温避光孵育二抗(二抗:PBS=1:500)2h后,PBS洗3×5min/次,染DAPI(DAPI:PBS=1:1000)5min,PBS洗3×5min/次。

(6)包埋

玻片上各滴1滴Fluoromount-G,将有细胞的一面盖上。

鉴定细胞为P1代细胞

3.2免疫荧光鉴定结果

           100X-DAPI                                  100X-fluorescence

            200X-DAPI                                 200X-fluorescence

原图见文件-免疫荧光

4.转染

4.1SV40过表达慢病毒基本信息

鸡小肠上皮细胞永生化细胞构建方法及SV40基因检测结果

4.2转染

(1)将细胞接种6孔板,每孔细胞数约为1×105 个,

(2)第二天,待细胞贴壁后,换液,

(3)加入1mLwan全培养基,再加20 μL SV40过表达慢病毒,

(4)混匀后继续培养,

(5)12h后观察细胞状态,并更换为新鲜培养基,

(6)当细胞长满板底后,传代至T25培养瓶中。

细胞转染图片如下:

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原图见文件-转染

5.筛选

5.1杀灭曲线的确定

(1)将未转染的细胞按每孔0.05million铺入24孔板,孵育过夜,

(2)第二天,除去24孔板中旧的培养基,

(3)将含不同浓度嘌呤霉素(1ug/mL,2ug/mL,3ug/mL,4ug/mL,5 ug/mL,6ug/mL,7ug/mL)的新鲜培养基加入已铺有细胞的24孔板,

(4)每2天更换新鲜的筛选培养基,

(5)每天观察细胞的存活比例,

(6)最小的嘌呤霉素使用浓度就是从嘌呤霉素筛选开始1-4d内杀死所有细胞的zui低筛选浓度。

结果:嘌呤霉素的使用浓度为1ug/mL,作用时间2d。

5.2嘌呤霉素筛选转染细胞

(1)第一天,将转染的细胞按每孔0.05million铺入24孔板,孵育过夜

(2)第二天,除去24孔板中旧的培养基,

(3)加入含嘌呤霉素(1ug/mL)的筛选培养基,孵育,

(4)每2天更换新鲜的筛选培养基,

(5)每天观察细胞的存活比例,

(6)在同一时间点(2d)存活的细胞,即为转染成功的细胞,

(7)对筛选后的细胞进行扩增。

6.细胞扩增

将筛选后的细胞进行扩增,筛选后的细胞为P1代,扩增至少到12代。

永生化的细胞图片如下:

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原图见文件-永生化

鸡小肠上皮细胞永生化细胞Realtime-PCR检测SV40基因

鸡小肠上皮细胞永生化细胞构建方法及SV40基因检测结果

                                                                                                                        图1 扩增曲线

                                                                                 Sample 1为原代鸡小肠上皮细胞;Sample 2为永生化鸡小肠上皮细胞

鸡小肠上皮细胞永生化细胞构建方法及SV40基因检测结果

                                                                                                                                图2 融解曲线

                                                                                         Sample 1为原代鸡小肠上皮细胞;Sample 2为永生化鸡小肠上皮细胞

鸡小肠上皮细胞永生化细胞构建方法及SV40基因检测结果

                                                                                                          图3  SV40基因表达

                                                                      Sample 1为原代鸡小肠上皮细胞;Sample 2为永生化鸡小肠上皮细胞

                                                             表1  各孔Ct值及Tm值

                            Sample 1为原代鸡小肠上皮细胞;Sample 2为永生化鸡小肠上皮细胞


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